糖原 PAS 染色试剂盒（细胞专用）

糖原 PAS 染色试剂盒（细胞专用）
(Periodic Acid-Shiff stain Assay)
使用说明

 产品简介
        
         糖原 PAS 染色（Periodic Acid-Schiff stain）主要用来检测组织中的糖原或其他多糖类物质，是病理学中常规的染色方法之一。随着医学实验技术的发展，糖原染色的应用范围更加广泛，比如，可以用以证明与鉴定细胞内空泡状的性质，心肌病变及其他心血管疾病的诊断，糖原累积病的诊断和研究，糖尿病以及某些肿瘤的诊断等领域。还可以观察肾小球基底膜、结肠杯状细胞、中性粘液物质、阿米巴滋养体和霉菌的着色等。该试剂盒的主要原理是，过碘酸是一种强氧化剂，它能够将多糖分子中相邻的 1，2-乙二醇基，使之氧化变为二醛基，醛基与 Schiff 试剂能够结合成一种品红化合物，产生紫红色，定位于胞浆上。
        由于高碘酸还可以氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸的浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基团氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
        糖原 PAS 染色试剂盒（细胞专用）经过多次优化，大大增强了染色的效果，操作简便快捷，性能稳定。氧化剂、苏木素浓度更低，更适用于细胞、超薄组织切片染色，且无须盐酸乙醇分化步骤。该试剂盒仅适用于科研领域，不得应用于临床检验。

产品组分

使用注意事项

1、氧化剂氧化时间不宜过久，氧化温度以 18~22°C 最佳。
2、氧化剂和 Schiff 氏溶液应置于 4°C 密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前最好提前取出恢复至室温后，避光暗处使用。
3、氧化剂和 Schiff 氏溶液的作用时间非常重要，依据切片的厚薄、组织的类别等因素决定。
4、如常规组织切片染色，建议采购糖原 PAS 染色试剂盒，因为其氧化剂和苏木素溶液的浓度相对较高。
5、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

实验步骤（仅供参考）

1、细胞、骨髓涂片用 PAS 固定液固定 10~15 分钟。
2、水洗、晾干。
3、置于氧化剂中，室温（18~30°C）氧化 15~20 分钟。
4、自来水冲洗两次，再用蒸馏水浸洗 2 次。
5、样本放入 Schiff 氏溶液，置于室温（18~30°C）阴暗处，浸染 10~20 分钟。
6、亚硫酸钠溶液滴洗两次，每次 2 分钟。
7、流水冲洗 2 分钟。
8、样本置于苏木素染色液中，染细胞核 1~2 分钟。
9、自来水冲洗、晾干、镜检。

 染色结果分析

备注：颜色深浅很大程度上取决于在氧化剂溶液和 Schiff 氏溶液中作用时间的长短。

阴性对照（可选）：

1、   取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3）100ml，处理 30-60 分钟，与其他切片共同入氧化剂。结果应为阴性。
2、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30-60 分钟，与其他切片共同入氧化剂。结果应为阴性。
3、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过氧化剂这一步，直接入Schiff 氏溶液，结果应为阴性。